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正式測定前務(wù)必取2-3個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定                                             

測定意義：

H₂O₂是生物體內(nèi)最常見的活性氧分子，主要由SOD和XOD等催化產(chǎn)生，由CAT和POD等催化降解。H₂O₂不僅是重要的活性氧之一，也是活性氧相互轉(zhuǎn)化的樞紐。一方面，H₂O₂可以直接或間接地氧化細胞內(nèi)核酸，蛋白質(zhì)等生物大分子，并使細胞膜遭受損害，從而加速細胞的衰老和解體；另一方面H₂O₂也是許多氧化應(yīng)急反應(yīng)中的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子。

測定原理：

H₂O₂與硫酸鈦生成黃色的過氧化鈦復(fù)合物，在415nm有特征吸收。

試劑的組成和配制：

試劑二：粉劑×1瓶，4℃保存；臨用前加入10ml濃鹽酸充分溶解備用。用不完的試劑4℃保存；(溶解時間較長，約30min，可40℃-60℃加熱溶解，務(wù)必提前準備)

自備儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、可調(diào)式移液器、1 ml玻璃比色皿、丙酮60ml、濃鹽酸10ml、研缽和冰。

H₂O₂提取：

1、細菌或細胞樣品的制備：收集細菌或細胞到離心管內(nèi)，離心后棄上清；按照細菌或細胞數(shù)量（104個）：試劑一體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1ml試劑一），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復(fù)30次）；用試劑一定容至1ml；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

2、 組織樣品的制備：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1ml試劑一）進行冰浴勻漿；轉(zhuǎn)移至EP管中，用試劑一定容至1ml，8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

3、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟：

1、分光光度計預(yù)熱30min以上，調(diào)節(jié)波長至415nm，蒸餾水調(diào)零。

2、將試劑二、三和四37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴10min以上。

3、在EP管中按順序加入下列試劑

4000g，25℃離心10min，棄上清，留沉淀

加入試劑四溶解沉淀后，室溫靜置5min，倒入比色皿中，測定415nm處吸光值A。對照管只要做一次即可。計算ΔA＝A測定-A對照。

注意事項:

1、由于試劑一易揮發(fā)，試劑一必須先預(yù)冷再加，研磨時必須在冰上研磨。

2、本試劑盒中試劑的揮發(fā)性較高，請帶一次性手套和口罩。

H₂O₂含量計算：

1、標準條件下測定的回歸曲線，y = 0.7488x + 0.0006 (x為標準品濃度，μmol/ml；y為ΔA)。

2、血清（漿）中H₂O₂含量的計算：

H₂O₂含量（μmol/ml）＝(ΔA-0.0006) ÷0.7488=1.34×(ΔA-0.0006)

3、細菌、細胞或組織中H₂O₂含量計算

（1）按照蛋白濃度計算

H₂O₂含量(μmol/mg prot)= [ (ΔA-0.0006) ÷0.7488×V1]÷(V1×Cpr)= 1.34×(ΔA-0.0006)÷Cpr

需要另外測定，建議使用本公司BCA蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。

（2）按照樣本質(zhì)量計算

H₂O₂含量(μmol/g鮮重)= [ (ΔA-0.0006) ÷0.7488×V1]÷(W ×V1÷V2)= 1.34×(ΔA-0.0006)÷W

 (3 ) 按照細菌或細胞密度計算：

H₂O₂含量(μmol/10⁴)= [ (ΔA-0.0006) ÷0.7488×V1]÷(500×V1÷V2)=0.0027×(ΔA-0.0006)

V1：加入反應(yīng)體系中樣本體積，1ml；V2：加入提取液體積，1ml；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；500：細胞或細菌總數(shù)，500萬。

注意：標曲線性范圍為0.1μmol/ml到2μmol/ml，吸光度ΔA線性范圍為0.07-1.5，若ΔA超過1.5則需要稀釋，計算公式乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù)。